Plateau immunomonitoring chez l’humain

Le plateau d’immunomonitoring chez l’humain (IMP) de l’Institut Toulousain des Maladies Infectieuses et Inflammatoires (Infinity, Inserm UMR1291 – CNRS UMR5051 – Université de Toulouse) est spécialisé dans le stockage et l’analyse des cellules immunitaires humaines

Notre équipe / Contacts
Supervision du plateau : Raphaëlle ROMIEU-MOUREZ (PhD, raphaelle.romieu-mourez@inserm.fr)
Gestion des biobanques : Pierre Emmanuel PAULET (pierre-emmanuel-paulet@inserm.fr)
Responsable scientifique : Roland LIBLAU (MD PhD, roland.liblau@inserm.fr)
 
Courriel : imp.infinity@inserm.fr              Tel : +33 5 62 74 86 66
Comité de pilotage
Claire CENAC (Eq. J-C. Guéry)
Maïlys MOUYSSET (Eq. M. Diaz)
Nathalie JONCA (Eq. M. Simon)
Emmanuel TREINER (Eq. A. Saoudi / R. Liblau)
Xavier IRIART (Eq. N. Blanchard)
Florence ABRAVANEL (Eq. J. Izopet / B. Lagane)
Romain TORRES (Eq. J. van Meerwijk / O. Joffre)
Sylvie GUERDER (Eq. N. Fazilleau / S. Guerder)
Loïc DUPRE (Eq. R. Lesourne / L. Dupré)
Laurent GUILLEMINAULT (Eq. L. Reber)

Carole LE COZ (Eq. C. Le Coz)

Expertise

BIOBANKING DE PBMC Y COMPRIS EN SITUATION CLINIQUE ET SUR ÉCHANTILLONS FRAGILES
BIOBANKING DE TISSUS LYMPHOÎDES
CONTRÔLES DE QUALITÉ ASSOCIÉS AU BIOBANKING
ELISPOT
DOSAGE DE BIOMARQUEURS EN ELECTROCHIMILUMINESCENCE (TECHNOLOGIE MESO SCALE DISCOVERY)
IMMUNOMONITORING PHENOTYPIQUE ET FONCTIONNEL SUR COHORTES CLINIQUES
INFORMATION ET SUIVI RÉGLEMENTAIRE DE LA RECHERCHE SUR LA PERSONNE HUMAINE

Soutien à la recherche

Pour les équipes de recherche académiques ou privées, nous proposons :

  • Des formations, incluant l’accueil des usagers en autonomie supervisée : votre équipe réalise directement les expériences dans notre laboratoire, avec accès à nos équipements et à notre expertise. Ces formations peuvent notamment porter sur le biobanking de cellules immunitaires humaines, l’ELISPOT, la quantification de biomarqueurs avec la technologie Meso Scale Discovery, ou toute autre technique développée sur le plateau.
  • Des services pour des analyses ponctuelles, adaptés aux besoins spécifiques de vos projets de recherche.
  • Des services complets, couvrant le développement d’essais, l’immunomonitoring et l’accompagnement réglementaire, dans le cadre de projets sur l’humain portés par des équipes de recherche.

Nos collections de PBMC et de tissus lymphoïdes issus de sujets sains sont exclusivement accessibles aux équipes de recherche d’Infinity.

Vous pouvez nous joindre par courriel : imp.infinity@inserm.fr

Activités

Biobanking de cellules immunitaires humaines

Les collections internes au plateau sont réservées aux équipes de recherche d’Infinity. Pour les échantillons des équipes de recherche, nous proposons une formation au biobanking ou une réalisation en autonomie supervisée dans nos locaux. Le cadre éthique, juridique et administratif doit être mis en place avant le traitement des échantillons.

Nos collections internes

PBMC et plasma de sujets sains

Cryopréservation de PBMC

  • Les PBMC sont isolés à partir de dons de sang contrôlés, fournis par l’Établissement Français du Sang (EFS) en Occitanie. Chaque don est vérifié pour l’absence d’infections transmissibles (hépatites, VIH, HTLV et syphilis).

  • Notre banque compte plus de 350 donneurs depuis 2015, avec 60 à 100 nouveaux donneurs chaque année. Nous mettons à disposition des ampoules congelées contenant au moins 15 millions de PBMC, ainsi que du plasma pour les analyses sérologiques. Une analyse réalisée en 2024 sur les PBMC congelés de 56 donneurs a montré une viabilité médiane de 86,7 % (76,8 à 95,5 %) après 20 ± 4 h de décongélation. Nous vérifions chaque année que cette viabilité est maintenue sur une dizaine d’ampoules sélectionnées aléatoirement.

  • Les échantillons sont caractérisés selon l’âge, le sexe, le groupe sanguin, les typages HLA-A2 et HLA-B7, ainsi que les sérologies CMV et toxoplasmose.

Tissus lymphoïdes de sujets sains

  • En collaboration avec le CHU de Toulouse et la Clinique Rive Gauche, nous étudions des tissus lymphoïdes pédiatriques de sujets sains. Ces tissus, dont les fonctions et la composition cellulaire diffèrent de celles du sang périphérique, proviennent de déchets opératoires d’amygdales et de thymus pédiatriques, collectés avec l’accord des familles.
ELISPOT

 

Test ELISPOT sur PBMC d’un patient hospitalisé au CHU de Toulouse

 

Nous proposons l’ELISPOT en libre-service ou en autonomie supervisée. Selon le volumes des projets, les analyses peuvent être ponctuellement réalisées par le plateau. La technologie est utilisée en routine dans le cadre d’études fondamentales et cliniques, notamment en collaboration avec le CHU de Toulouse.

Notre lecteur ELISPOT S6 Ultra-V Analyzer de Cellular Technology Ltd permet la lecture d’ELISPOT simples et doubles (BCIP/NBT et/ou AEC), la lecture de Fluorospot simples et doubles (FITC et/ou PE) et l’analyse de plaques ELISPOT de 96 puits

Dosage de biomarqueurs en électrochimiluminescence (Meso Scale Discovery)

Quick Plex SQ120

Dosage multiplex

 

 

 

 

Nous proposons la quantification Meso Scale Discovery (MSD) analysées sur le Quick Plex SQ120 en libre-service ou en autonomie supervisée. Selon le volumes des projets, les analyses peuvent être ponctuellement réalisées par le plateau.

Le site https://www.mesoscale.com/ recense les centaines de quantifications et multiplex possibles sur un large éventail de biomarqueurs humains et animaux (primates, rongeurs, chien), tous adaptées au Quick Plex SQ120 :

  • Le principe est l’ELISA en remplaçant la révélation colorimétrique par une révélation en électrochimiluminescence qui est sensible à cause de l’absence d’interférence entre le signal excitateur électrique et le signal émetteur lumineux. On obtient une limite inférieure de détection habituellement du picogramme/mL au femtogramme/mL et une excellente linéarité (5-log), le tout avec une possibilité de multiplexage (ex U-plex allant jusqu’à 10-plex)
  • Il est possible d’adapter des tests ELISA existants au dosage en électrochimiluminescence
  • Les analyses peuvent porter sur des substrats biologiques divers tels que plasma, sérum, surnageant cellulaire, broyat de tissus, liquide céphalorachidien
  • Les dosages se réalisent sur plaques 96 puits complètes ou partielles avec moins de 25microL de substrat par dosage
Immunomonitoring

À la demande et après validation par notre comité de pilotage, nous réalisons des études d’immunomonitoring phénotypique et fonctionnel, y compris longitudinales, sur des échantillons frais ou cryopréservés. Le plateau a notamment étudié des prélèvements d’enfants asthmatiques suivis au CHU de Toulouse, de patients infectés par le virus de l’hépatite E, de patients hospitalisés après une infection par le SARS-CoV-2 et de patients atteints de narcolepsie.

Les études se réalisent classiquement en 3 phases :

  • 1ere phase : mise au point et validation des protocoles, souvent en s’appuyant sur la biobanque de sujets sains
  • 2eme phase : réalisation en routine des protocoles sur les cohortes cliniques ciblées
  • 3eme phase : lorsque possible, nous automatisons l’acquisition et le traitement des données à l’aide de scripts R ou Python. Par exemple, nous traitons automatiquement des fichiers texte issus d’analyses ELISPOT afin d’obtenir des valeurs normalisées de spot-forming cells (SFC) dans un fichier Excel.

La durée de ces études est par essence variable, allant de quelques semaines à plusieurs mois avec une transmission des protocoles et résultats aux équipes demandeuses.

Développement technologique et transfert

Nous effectuons, à la demande et après validation par notre comité de pilotage, l’étude de nouvelles techniques en biobanking et immunomonitoring, en incluant l’évaluation de leurs variations intra- et inter-expérimentales, à savoir entre les expérimentateurs et au cours du temps. Nous enseignons nos approches pour soutenir des recherches translationnelles et cliniques. 

Exemples de développements réalisés sur le plateau

  • Contrôles de qualité de biobanques de PBMC potentiellement fragiles (ex : échantillons transportés depuis d’autres régions de France, patients avec certaines pathologies pouvant affecter les cellules sanguines)
  • Isolement de PBMC d’échantillons sanguins de faible volume en vue d’études pédiatriques
  • Test de kits d’isolement de PBMC en comparaison avec les méthodologies classiques par Ficoll
  • Comparaison de méthodes automatisées de comptage de PBMC frais ou cryopréservés
  • Standardisation des analyses ELISPOT
  • ELISPOT ex vivo sur PBMC frais en comparaison sur des PBMC cryopréservés
  • Mise au point de profil cytométriques multiparamériques en lien avec le plateau cytométrie d’Infinity
Information et réglementation de la recherche sur la personne humaine

À la demande et après validation par notre comité de pilotage, nous accompagnons les équipes dans leurs démarches administratives afin de faciliter l’information des patients et le respect du cadre éthique et légal de la recherche sur la personne humaine. Pour les projets promus par l’Inserm, nous faisons également le lien avec les spécialistes des affaires réglementaires des tutelles CHU et Inserm.

Exemples

  • Rédaction de notices d’information et de formulaires de consentement éclairé pour les patients mineurs et majeurs 
  • Déclaration de collections d’échantillons biologiques humains auprès du MESR et du Comité de protection des personnes 
  • Mise en place du cadre éthique, contractuel et administratif des recherches portant sur des déchets opératoires du CHU
Quelques publications auteur, contributeur ou détaillant les activités du plateau

Human immune-monitoring and ELISPOT in our core facility

  • Monitoring HLA-A2-restricted T cell responses and BCLA-specific serostatus during human latent Toxoplasma gondii infection suggests the implication of CD8+ T cells in parasite containment. Romieu-Mourez R, Paulet PE, Bassot E, Palak A, Carvaillo T, Dépéry L, Robert MG, Iriart X, Fillaux J, Berry A, Hakimi MA, Blanchard N. J Infect Dis. 2026 Jul 1:jiag333
  • Viral clearance and escape during therapy of COVID-19 outpatients: A prospective cohort study. Martin-Blondel G, Burgat P, Leducq V, Porrot F, Cottignies-Calamarte A, De Cruz A, Dorival C, Romieu-Mourez R, Chaubet C, Cazaentre V, Boumaza X, Richier Q, Gaborit B, Coustilleres F, Dubée V, Ader F, Yordanov Y, Schwartz O, Marcelin AG, Lusivika-Nzinga C, Carrat F, Soulié C, Liblau R, Bruel T; ANRS 0003S CoCoPrev Study Group. iScience. 2025 Nov 26;28(12):114226
  • Humoral and Cellular Immune Responses of Solid Organ Transplant Patients on Belatacept to Three Doses of mRNA-Based Anti-SARS-CoV-2 Vaccine. Abravanel F, Marion O, Del Bello A, Beunon T, Romieu-Mourez R, Couat C, Pucelle M, Staes L, Guitard J, Esposito L, Faguer S, Kamar N, Izopet J. Vaccines (Basel). 2022 Feb 24;10(3):354
  • Assessment of 4 Doses of SARS-CoV-2 Messenger RNA-Based Vaccine in Recipients of a Solid Organ Transplant. Kamar N, Abravanel F, Marion O, Romieu-Mourez R, Couat C, Del Bello A, Izopet J.JAMA Netw Open. 2021 Nov 1;4(11):e2136030
  • Separation of the CaV 1.2-CaV 1.3 calcium channel duo prevents type 2 allergic airway inflammation. Giang N, Mars M, Moreau M, Mejia JE, Bouchaud G, Magnan A, Michelet M, Ronsin B, Murphy GG, Striessnig J, Guéry JC, Pelletier L, Savignac M. Allergy. 2022 Feb;77(2):525-539
  • Circulating follicular helper T cells exhibit reduced ICOS expression and impaired function in narcolepsy type 1 patients. Nguyen XH, Dauvilliers Y, Quériault C, Perals C, Romieu-Mourez R, Paulet PE, Bernard- Valnet R, Fazilleau N, Liblau R. J Autoimmun. 2018 Nov;94:134-142
  • Conventional and innate lymphocytes response at the acute phase of HEV infection in transplanted patients. Abravanel F, Barragué H, Dörr G, Sauné K, Péron JM, Alric L, Kamar N, Izopet J, Champagne E.J Infect. 2016 Jun;72(6):723-730

Meso Scale Discovery biomarker quantification in our core facility

  • Toxoplasma gondii infection and chronic IL-1 elevation drive hippocampal DNA double-strand break signaling, leading to cognitive deficits. Belloy M, Schmitt BAM, Marty FH, Paut C, Bassot E, Aïda A, Alis M, Zahm M, Chaubet A, Garnier H, Flores-Aguilar T, Roitg E, Gutierrez-Loli R, Allart S, Ecalard R, Boursereau R, Ligat G, Gonzalez-Dunia D, Blanchard N, Suberbielle E. Nat Neurosci. 2025 Oct;28(10):2067-2077.
  • Immune signatures link myelin oligodendrocyte glycoprotein antibody-associated disease to other autoantibody-mediated conditions. Schmid J, Alberti C, Power L, Nuñez NG, De Feo D, Tyystjärvi S, Kulsvehagen L, Kreiner V, Ayroza Bleher AB, Lipps P, Swinnen S, Ingelfinger F, Ulutekin C, Chaubet C, Unger S, Kreutmair S, Marignier R, Korn T, Pröbstel AK, Liblau R, Becher B. Sci Transl Med. 2025 Oct 8;17(819)
  • Intact proviruses are enriched in the colon and associated with PD-1+TIGIT- mucosal CD4+ T cells of people with HIV-1 on antiretroviral therapy. Vellas C, Nayrac M, Collercandy N, Requena M, Jeanne N, Latour J, Dimeglio C, Cazabat M, Barange K, Alric L, Carrere N, Martin-Blondel G, Izopet J, Delobel P. EBioMedicine. 2024 Feb;100:104954

Use of our in-house biobanks

  • Sex Bias in IL-10 Production by Type I Regulatory T Cells Regulated by PI3K/mTOR Signaling. Debonlier A, Kari S, Bucciarelli F, Angles T, Perez-Pestel A, Fébrissy C, Laffont S, Liblau R, Lenfant F, Dunn SE, Guillermet-Guibert J, Astier AL. Neurol Neuroimmunol Neuroinflamm. 2026 Mar;13(2)
  • In vitro morphological profiling of T cells predicts clinical response to natalizumab therapy in patients with multiple sclerosis. Chaves B, Santos E Silva JC, Nakaya H, Socquet-Juglard N, Bucciarelli F, Prunier G, Almeida MV, Lacouture C, Kari S, Astier AL, Medeiros MA, Silva JHM, Liblau R, Cotta-de-Almeida V, Dupré L. Nat Commun. 2025 Jul 1;16(1):5533
  • Heterochromatic gene silencing controls CD4+ T cell susceptibility to regulatory T cell-mediated suppression in a murine allograft model. Noguerol J, Laviolette K, Zahm M, Chaubet A, Sahal A, Détraves C, Torres R, Demont C, Adoue V, Joffre C, Cammas F, van Meerwijk J, Joffre O. Nat Commun. 2025 Jan 10;16(1):566
  • Increased levels of circulating soluble CD226 in multiple sclerosis. Kari S, Bucciarelli F, Angles T, Oster AC, Cauboue P, Laviolette K, Mougenot M, Morandi E, Bernard I, Pignolet B, Bost C, Thomas J, Nogueira L, Saoudi A, Liblau R, Astier AL. Mult Scler. 2024 Feb 29:13524585241234489
  • Coordinated ARP2/3 and glycolytic activities regulate the morphological and functional fitness of human CD8+ T cells. Kamnev A, Mehta T, Wielscher M, Chaves B, Lacouture C, Mautner AK, Shaw LE, Caldera M, Menche J, Weninger WP, Farlik M, Boztug K, Dupré L. Cell Rep. 2024 Mar 26;43(3):113853
  • Lymphocyte migration and retention properties affected by ibrutinib in chronic lymphocytic leukemia. Rey-Barroso J, Munaretto A, Rouquié N, Mougel A, Chassan M, Gadat S, Dewingle O, Poincloux R, Cadot S, Ysebaert L, Quillet-Mary A, Dupré L. Haematologica. 2024 Mar 1;109(3):809-823
  • Eomes-dependent mitochondrial regulation promotes survival of pathogenic CD4+ T cells during inflammation. Joulia E, Michieletto MF, Agesta A, Peillex C, Girault V, Le Dorze AL, Peroceschi R, Bucciarelli F, Szelechowski M, Chaubet A, Hakim N, Marrocco R, Lhuillier E, Lebeurrier M, Argüello RJ, Saoudi A, El Costa H, Adoue V, Walzer T, Sarry JE, Dejean AS. J Exp Med. 2024 Feb 5;221(2):e20230449
  • Increased levels of circulating soluble CD226 in multiple sclerosis. Kari S, Bucciarelli F, Angles T, Oster AC, Cauboue P, Laviolette K, Mougenot M, Morandi E, Bernard I, Pignolet B, Bost C, Thomas J, Nogueira L, Saoudi A, Liblau R, Astier AL. Mult Scler. 2024 Feb 29:13524585241234489
  • Human papilloma virus-16-specific CD8+ T-cell expansions characterize different clinical forms of lichen planus and not lichen sclerosus et atrophicus. Viguier M, Pérals C, Poirier B, Battistella M, Aubin F, Bachelez H, Prétet JL, Gheit T, Tommasino M, Touzé A, Gougeon ML, Fazilleau N.Exp Dermatol. 2023 Mar 15
  • Human papilloma virus-16-specific CD8+ T-cell expansions characterize different clinical forms of lichen planus and not lichen sclerosus et atrophicus. Viguier M, Pérals C, Poirier B, Battistella M, Aubin F, Bachelez H, Prétet JL, Gheit T, Tommasino M, Touzé A, Gougeon ML, Fazilleau N.Exp Dermatol. 2023 Mar 15
  • HIV-1 infection enhances innate function and TLR7 expression in female plasmacytoid dendritic cells. Abbas F, Cenac C, Youness A, Azar P, Delobel P, Guéry JC.Life Sci Alliance. 2022 Sep 2;5(10):e202201452
  • Effector memory CD8 T cell response elicits Hepatitis E Virus genotype 3 pathogenesis in the elderly El Costa H, Gouilly J, Abravanel F, Bahraoui E, Peron J-M, Kamar N, Jabrane-Ferrat N, Izopet J PLoS Pathog. 2021 Feb; 17(2): e1009367
  • Hydroxychloroquine inhibits proteolytic processing of endogenous TLR7 protein in human primary plasmacytoid dendritic cells. Cenac C, Ducatez MF, Guéry JC. Eur J Immunol. 2022 Jan;52(1):54-61
  • TLR7 dosage polymorphism shapes interferogenesis and HIV-1 acute viremia in women. Azar P, Mejía JE, Cenac C, Shaiykova A, Youness A, Laffont S, Essat A, Izopet J, Passaes C, Müller-Trutwin M, Delobel P, Meyer L, Guéry JC. JCI Insight. 2020 Jun 18;5(12):e136047
  • The costimulatory molecule CD226 signals through VAV1 to amplify TCR signals and promote IL-17 production by CD4+ T cells. Gaud G, Roncagalli R, Chaoui K, Bernard I, Familiades J, Colacios C, Kassem S, Monsarrat B, Burlet-Schiltz O, de Peredo AG, Malissen B, Saoudi A. Sci Signal. 2018 Jul 10;11(538):eaar3083
  • TLR7 escapes X chromosome inactivation in immune cells. Souyris M, Cenac C, Azar P, Daviaud D, Canivet A, Grunenwald S, Pienkowski C, Chaumeil J, Mejía JE, Guéry JC Sci Immunol. 2018 Jan 26;3(19)
  • High-Dimensional Single-Cell Analysis Reveals The Immune Signature of Narcolepsy. F.J. Hartmann, R. Bernard-Valnet, C. Quériault, D. Mrdjen, L.M. Weber, E. Galli, C. Krieg, M.D. Robinson, X-H. Nguyen, Y. Dauvilliers, R.S. Liblau* & B. Becher*. J. Exp. Med. 2016 Nov 14;213(12):2621-2633

Contact, formulaires et réservation

– Afin d’accéder aux biobanques internes pour les équipes et les plateaux d’INFINITy, il suffit de nous envoyer par courriel un des formulaires de demande disponible sur l’intranet en respectant les délais et les procédures indiqués sur ces formulaires.

– La réservation du Quick Plex SQ120 Meso Scale Discovery (formation obligatoire) se fait en ligne https://www.infinity.inserm.fr/reservations/ (section « Appareils »), en indiquant si vous souhaitez emprunter l’agitateur thermostaté.

– Les autres équipements sont accessibles sans réservation.

Autres informations

Facturation

RÉSUMÉ TABLEAU DE LA FACTURATION : IMP INFINITY Grille tarifaire 2026


 

Protocoles et manuels techniques

Les documents sont disponibles sur requête à imp.infinity@inserm.fr

PBMC isolation and cryopreservation

PBMC thawing

Fresh and cryopreserved human immune cell counting (BT20 counter, Cellometer auto2000 counter, LUNA-FL counter, cytometry)

ELISPOT technology to numerate effector memory T cells

Booklet « ELISPOT reader »

Booklet « Introduction to Meso Scale Discovery technology and Quick Plex SQ120 reader for the dosage of biomarkers »

Partenaires Immunomonitoring

CNRS

CNRS